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ADCC活性をルシフェリンの発光量で測定できる遺伝子改変細胞 ADCC Bioassay Effector Cell V variant (High Affinity) and F variant (Low Affinity)

掲載日情報:2020/06/12 現在Webページ番号:65365

エフェクター細胞の代わりに、FcγRIIIaの高親和性バリアント(V158)あるいは低親和性バリアント(F158)を恒常的に発現する遺伝子改変Jurkat T細胞です。エフェクター細胞として用いることで、ADCC活性を測定できます。

ADCCとは

ADCC(Antibody-Dependent Cell-mediated Cytotoxicity、抗体依存性細胞傷害活性)とは、エフェクター細胞が関与する免疫防御機構です。がん細胞などの「標的細胞」の抗原に対して、特異的な抗体が結合します。次に、その抗体のFc部分に対し、FcγRレセプター(FcγRIIIa)を持つエフェクター細胞(NK細胞、マクロファージ、好中球など)が結合します。その結果エフェクター細胞が活性化し、最終的にグランザイムなどが放出されて標的細胞を破壊(傷害)します。


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ADCC活性測定概略

  1. エフェクター細胞の代わりに、遺伝子改変した Jurkat T細胞(#60540, #60541)を使用する。
  2. FcγIIIaレセプターからのシグナルが、NFAT (Nuclear Factor of Activated T cells) 応答配列の下流に組み込まれたホタルルシフェラーゼ遺伝子を活性化する。
  3. 生じたルシフェラーゼの多寡を、ルシフェリンを含むOne Step Luciferase Assay System(#60690)を用い、ルミノメーターで測定する。
ADCC活性測定概略

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応用例

■細胞培養の例

  1. 液体窒素中に保存した遺伝子改変Jurkat T細胞を、バイアルごと速やかに37℃の温水浴で融解し、中身をG418などの抗生物質を含まない10%FBS添加 RPMI1640培地を入れたチューブに移す。
  2. 細胞を遠心して回収し、温めた上記培地で再懸濁する。
  3. 細胞をT25フラスコに移し、5% CO2 、37℃の条件下で培養する。遺伝子改変Jurkat T細胞は、通常のJurkat T細胞よりも若干生育が遅い傾向がある。
  4. 24時間後、抗生物質を含まない10%FBS添加 RPMI1640培地を3~4 ml加える。
  5. 抗生物質入りのRPMI培地に交換し、2×106 cells/ mlに達しないうちに最初の継代を行う。継代比率は 1:10~1:20 とし、隔週で行う。

■ADCCアッセイ(ヒトCD20に対するキメラ抗体Rituximabの例)

用意するもの

  • 細胞:継代培養した遺伝子改変Jurkat T細胞、WIL2-S細胞(ヒトBリンパ芽球細胞で、標的細胞として使用)
  • 抗体:Rituximab(Anti-CD20, #71209)、非特異的コントロール抗体(ネガティブコントロール)
  • 抗体を含まないアッセイ用培地
  • ONE-Step Luciferase reagent (#60690)
  1. Rituximab、非特異的コントロール抗体、またはアッセイ用培地に、それぞれ遺伝子改変Jurkat T細胞(FcγRIIIa (F158))を加え、さらに標的細胞を添加(あるいは非添加)し、5時間以内の刺激を与えます。
  2. ONE-Step Luciferase reagentを加え、Fcγレセプター由来のシグナルによるNFATレポーター遺伝子の活性化(ルシフェラーゼの増加)をルミノメーターで計測します。
Rituximabの添加量発光強度

非特異的抗体に標的細胞を添加した群、あるいはRituximabのみではほとんど発光は見られないが、Rituximabに標的細胞を加えた群では強い発光が観察され、また発光強度は Rituximabの添加量に応じていた。


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ADCCバイオアッセイ用細胞

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