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                        CRISPY Master Mix for qPCR-based Gene Editing Quantitation
        
    
CRISPR/Cas9によるゲノム編集効率を簡単に測定できます! CRISPY Master Mix for qPCR-based Gene Editing Quantitation
掲載日情報:2020/12/04 現在Webページ番号:69912
CRISPYアッセイを用いて、CRISPR/Cas9でゲノム編集された細胞数の割合を迅速、高感度かつ簡単に測定できるqPCR用マスターミックスです。スナップバックプライマー(別途用意)、および5'→3'エキソヌクレアーゼと鎖置換活性の両方を欠いたDNAポリメラーゼを用いるCRISPYアッセイは、ミスマッチ検出アッセイに比べてあらゆる点で優れています。
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CRISPYアッセイの原理
A.プライマーの設計

プロトスペーサー隣接モチーフ(PAM, protospacer adjacent motif)配列の先頭塩基(GGN)から3~4塩基上流の塩基を中心とする14~16 nt を選択し、スナップバックタグを設計する。未編集配列と相同なスナップバックタグと、および5'→3'エクソヌクレアーゼ活性と鎖置換活性がないDNAポリメラーゼを用いてqPCRを行う。
        
    
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特長
- 標的領域における編集効率を測定できます。
 - ワンステップのワークフローで、1時間以内に測定結果が得られます。
 - DNAの精製は不要です。
 - 最低0.5 ngのDNA量で測定が可能です。
 - 高感度で、1%という低いゲノム編集成功率の検出が報告されています。
 - ゲルイメージングに代わりCt値に基づいて定量を行うため、より信頼性ある結果が得られます。
 - 使用回数:200 reactions
 
※ 測定に必要なプライマーは含まれておりません。別途、本アッセイ専用にスナップバックプライマーを設計いただく必要があります。
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使用例
DNA (cytosine-5-)-methyltransferase 3 beta (DNMT3B) 遺伝子を編集したHEK293細胞および未編集のHEK293細胞からDNAを抽出し、本製品を用いて編集効率の測定を行った。標準プライマーでは編集・未編集関わらず、すべてのDNAが増幅される。スナップバックプライマーでは編集済みのDNAのみが増幅されたと考えられる。編集効率は標準プライマーとスナップバックプライマーのCt値差から算出する。

融解曲線の違いも編集済みDNAに欠損があることを示している。
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価格
[在庫・価格 :2025年11月04日 12時55分現在]
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                CRISPY Master Mix for qPCR-based Gene Editing Quantitation, 200 rxn | 
            
                
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[在庫・価格 :2025年11月04日 12時55分現在]
CRISPY Master Mix for qPCR-based Gene Editing Quantitation, 200 rxn
文献数: 0
- 商品コード:CRISPY100A-1
 - メーカー:SBI
 - 包装:1ml
 - 本製品は取扱中止になりました
 
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