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高発現のセンダイウイルスベクター SeV Packaging System

掲載日情報:2025/05/28 現在Webページ番号:72146

pSeVベクタープラスミドをF発現Vero細胞にトランスフェクションし、感染力の高いSeVベクターを産生させるキットです。産生されたベクターは、直接標的細胞への感染に用いることができ、二次感染を生じない非伝播型のSeVベクターです。キットにはpSeV Vector、SeVベクターのパッケージングに必要なコンポーネントの発現を最適化したSeV Packaging MixVero-F細胞、SeVベクター力価測定および感染効率の評価用のpSeV(MHN)mEmerald Vector(Starter Pack 2、#S-0011のみ)が含まれています。

SeV Packaging Systemと他の発現システムとの比較例

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SeV Packaging Systemと他の発現システムとの比較例

SeVは他のベクターに比べて遺伝子発現能力が高い。

Lenti、AdV、およびAAVのプロモーター:CBhプロモーター
SeV、Lenti、AdV、AAVはEmGFP、mRNAはEGFP、感染3日後の評価

SeV Packaging Systemについて

センダイウイルス(Sendai Virus:SeV)とは

センダイウイルスはパラミクソウイルス科に属するウイルスです。一本鎖のマイナス鎖RNAゲノムを有しており、細胞質で複製するため、原理的に染色体に組み込まれることはありません。SeVは細胞膜上のシアル酸を介して感染するため、非分裂細胞を含む幅広い細胞種に感染することができます。感染細胞内でSeVゲノムが自立複製するため、転写産物の高発現が期待できます。ヒトへの病原性の報告はありません。


センダイウイルスベクター(SeVベクター)とは

センダイウイルスベクターは、上記のSeVの特徴を利用した遺伝子導入用のベクターです。SeVのRNAゲノムには3'端から順に、RNAゲノムに結合するヌクレオカプシドタンパク質(N)、RNAポリメラーゼの小サブユニットであるリン酸化タンパク質(P)、ウイルス粒子の膜構造を維持するマトリックスタンパク質(M)、細胞への侵入に関わる膜融合タンパク質(F)、細胞との結合に重要なヘマグルチニン-ノイラミニダーゼタンパク質(HN)、RNAポリメラーゼの大サブユニットであるラージタンパク質(L)がコードされています(図1)。さらにP遺伝子にはPタンパク質とは読み枠が異なるCタンパク質やVタンパク質がコードされています。一般的に伝播性に関与するF遺伝子をゲノムから欠失させ、F遺伝子を発現する産生細胞を用いることで二次感染しない非伝播性のSeVベクターが得られます。


A:センダイウイルス粒子の構造 B:センダイウイルスゲノムの構造
A:センダイウイルス粒子の構造
B:センダイウイルスゲノムの構造
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図1 センダイウイルス粒子とゲノムの構造


SeV Packaging Systemとは

SeV Packaging Mix

SeV Packaging System

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図2.SeV Packaging System

SeV Packaging MixはSeVベクターのパッケージングに必要なコンポーネントの発現を最適化することで、高力価のSeVベクターを得ることを可能にした製品です。発現させたい遺伝子を搭載したpSeVベクタープラスミドとPackaging MixをF発現細胞(Vero-F)に遺伝子導入することで、Packaging MixよりT7ポリメラーゼ、パッケージング促進因子PEF、SeV由来のN、P、Lが一過性に発現されます。そしてpSeVベクタープラスミドから転写されたSeVゲノムはN、P、LとRNP複合体を形成し、自己複製と転写が開始され、最終的にウイルス粒子を得ることができます(図2)。多くの場合、取得したSeVベクターを濃縮することなく、直接標的細胞の感染に使用できます。



pSeVベクタープラスミド

pSeVベクタープラスミド(図3)はF遺伝子欠失型のSeVベクタープラスミドです。pSeVベクタープラスミド上にはT7プロモーター、ハンマーヘッド(Hh)リボザイム、F遺伝子欠失型SeVゲノム、HDVリボザイムの順で配置されています。T7ポリメラーゼで転写されたRNAはHhリボザイムとHDVリボザイムにより6の倍数のSeVゲノムとして切り出されます。


pSeVのベクターマップおよびクローニングサイト

pSeV(MHN)mEmerald pSeV(MHN)mEmerald vectormap
pSeV pSeV vectormap
+位 PM位 HNL位
+位 PM位 HNL位
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図3.pSeV のベクターマップおよびクローニングサイト
Hh-Rbzの直後からHDV-Rbzの直前までが6の倍数

Vero-F細胞

センダイウイルスの産生に最適化されたVero細胞由来のF発現細胞株で、SeVの感染に必要なFタンパク質を供給するための細胞株です。Vero-F細胞の継代時には終濃度0.7 mg/mlのG418を添加し、SeVベクターの産生時にはG418を使用しません。高力価の感染性SeVを得るためにSeV Packaging Mixと目的遺伝子を挿入したpSeVベクタープラスミドをVero-F細胞にトランスフェクションし、5%CO2インキュベーター内で37℃にて培養します。トランスフェクション翌日から32℃に設定した5%CO2インキュベーター内で培養を行い、2.5 μg/mlトリプシンを添加した無血清培地(E-MEM)で毎日培地交換し、SeVを産生します。得られたSeV上清をVero-F細胞に再感染することでSeVの拡大産生が行えます。




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製品ラインナップ

品名をクリックすると製品の詳細、商品コードをクリックすると各製品の価格表をご覧いただけます。

キット内容 品名 SeV Packaging System
Starter Pack 1 Starter Pack 2
商品コード S-0010 S-0011
Vero-F C-0001
SeV Packaging Mix M-0001-10
pSeV Vector G-0010
pSeV(MHN)mEmerald Vector G-0011

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操作方法概略

  1. pSeVベクタープラスミドへ目的遺伝子をクローニングする。
  2. 1.でクローニングしたpSeVベクタープラスミドを調製する。
  3. Vero-F細胞を播種する(Vero-F細胞はトランスフェクション当日にコンフルエントになるように前日に播種する*1)。
  4. pSeVベクタープラスミド、およびSeV Packaging MixをVero-F細胞へトランスフェクション(37℃培養)する。
  5. トランスフェクション翌日にトリプシン(終濃度 2.5 μg/ml)を添加した無血清培地で培地交換(32℃培養)を行う(毎日トリプシン添加無血清培地で培地交換)。
  6. SeVベクター上清を回収する(トランスフェクションから3~4日後)。


  7. <以下は拡大産生の手順>

  8. SeVベクターの拡大産生(Vero-F細胞に感染し、トリプシン添加無血清培地で培地交換を行う(32℃培養))。
  9. SeVベクター上清を回収する(種ウイルス*2感染から2~4日後)。

*1 Vero-F細胞のトランスフェクション効率を高めるためです。
*2 種ウイルス:SeVベクターの拡大産生に用いた複製元のSeVベクターを含む培養上清。

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pSeV ベクタープラスミドへの目的配列のクローニング

  • 重要1:センダイウイルスを含むパラミクソウイルスのゲノムはゲノム塩基の総数が6の倍数でなければ複製することができません。このパラミクソウイルスの性質はrule of 6と呼ばれています。例えば、センダイウイルスの野生株は15,384塩基(6の倍数;6×2,564)ですが、その前後の15,383、15,385塩基や、3の倍数であっても6の倍数でない15,381塩基では、ゲノムの複製を行えなくなります。塩基長の調整は本来の終止コドンの後ろに終止コドンを加えるなど任意の塩基を追加することで調整可能です。

  • 重要2:センダイウイルスの転写にはRNA依存性RNAポリメラーゼが用いられ、EIS配列という独自の制御配列が必要です(EIS:転写終止配列(9塩基)、介在配列(3塩基)、転写開始配列(10塩基))。搭載遺伝子の下流に22塩基からなるEIS配列(TAAGAAAAACTTAGGGTGAAAG)を必ず付加して下さい。EIS配列を挟むことで複数遺伝子の同時搭載も可能です。A、B、Cの3種類の遺伝子を搭載する場合はA-EIS-B-EIS-C-EISのように配列を準備して下さい。搭載遺伝子からのタンパク質の翻訳にはEIS配列とは別に開始コドンと終止コドンが必要です。EIS配列で挟む遺伝子毎に開始コドンと終止コドンがあることを確認して下さい。これらの遺伝子発現量はA>B>Cの順になります。

  • 重要3:pSeVベクタープラスミドへのクローニング位置はN遺伝子の手前の+(プラス)位やP遺伝子とM遺伝子の間のPM位、HN遺伝子とL遺伝子の間のHNL位と後ろに搭載するに従って発現量が低下します。+位に搭載することで最も発現量が向上しますが、P遺伝子の前に長い遺伝子を配置するとセンダイウイルスの複製に影響を与えます。2,000塩基以上を搭載する場合はPM位に搭載して下さい。遺伝子発現を抑えたい場合はHNL位に搭載して下さい。



  • 補足1:センダイウイルス搭載遺伝子にもコザック配列(Kozak sequence)やコドンの最適化が有効です。poly A配列は不要です。

  • 補足2:搭載遺伝子の塩基配列内にEIS配列(特に転写終止配列)と類似の配列*3 がある場合やフレームシフトを生じやすい配列*4が存在する場合はサイレント変異を導入して下さい。例えば、搭載遺伝子内にリジンをコードするAの連続AAA/AAAが存在する場合は、AAG/AAAやAAG/AAGなどのようにサイレント変異を導入して下さい。サイレント変異の導入により、SeVベクターの産生効率や転写効率の低下を避けることができます。

  • *3 SeVの転写終止配列はTAAGAAAAAですが、WAHVAAAAAも終止配列として機能する可能性があります(W:A or T、H:A or T or C、V:A or C or G)。
  • *4 X/XXZ/ZZNのような配列がフレームシフトを生じやすい配列です。フレームシフトを生じる具体的な例としてA/AAA/AAG配列があります。このA/AAA/AAG配列はSeVの配列中P遺伝子のみに存在し、RNA編集によりPタンパク質とは読み枠の異なるVタンパク質が翻訳されます。

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SeVベクター作製例

SeVベクター作製例(pSeV(MHN)mEmerald)(12ウェルプレート)

12ウェルに播種したVero-F細胞にpSeV(MHN)mEmeraldとSeV Packaging Mixをトランスフェクションした。トランスフェクション翌日から32℃に設定した5%CO2インキュベーターで培養し、毎日2.5 μg/mlトリプシン含有の無血清E-MEMで培地交換し、3日後のmEmeraldの蛍光を蛍光顕微鏡下で観察した。

SeVベクター作製例(pSeV(MHN)mEmerald)(12ウェルプレート)

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図4.Vero-F細胞にTransIT-Lentiを用いてトランスフェクションを行い、3日後のmEmeraldの蛍光を蛍光顕微鏡下で観察した。ウェル全体にmEmerald陽性細胞が広がり始めている。


SeVベクターの拡大産生例(pSeV(MHN)mEmerald)(12ウェルプレート)

12ウェルに播種したVero-F細胞に図4のSeVを含む培養上清を全量感染し、32℃に設定した5%CO2インキュベーターで培養、3日後のmEmeraldの蛍光を蛍光顕微鏡下で観察した(トランスフェクションから6日目)。週末(土、日)は培地交換を行わず、週明けの月曜日に2.5 μg/mlトリプシン含有の無血清E-MEMで培地交換した。

SeVベクターの拡大産生例(pSeV(MHN)mEmerald)(12ウェルプレート)

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図5.図4のSeVを含む培養上清(トランスフェクション3日後の培養上清)をVero-F細胞に植え継ぎ感染し、感染3日後のmEmeraldの蛍光を蛍光顕微鏡下で観察した。ウェル全体にmEmerald陽性細胞が広がっている。


SeVベクターの拡大産生例(pSeV(MHN)mEmerald)(T25フラスコ)

T25フラスコに播種したVero-F細胞に図5の翌日のSeVを含む培養上清を全量感染し、32℃に設定した5%CO2インキュベーターで培養、毎日2.5 μg/mlトリプシン含有の無血清E-MEMで培地交換し、3日後のmEmeraldの蛍光を蛍光顕微鏡下で観察した(トランスフェクションから10日目)。

SeVベクター作製例(pSeV(MHN)mEmerald)(12ウェルプレート)

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図6.図5の翌日のSeVを含む培養上清をT-25フラスコのVero-F細胞に植え継ぎ感染し、感染3日後のmEmeraldの蛍光を蛍光顕微鏡下で観察した。T25フラスコ全体にmEmerald陽性細胞が広がっている。

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参考文献

  1. Garcin, D., et al., "A highly recombinogenic system for the recovery of infectious Sendai paramyxovirus from cDNA: generation of a novel copy-back nondefective interfering virus.", EMBO J., 14(24), 6087~6094 (1995). [PMID:8557028]
  2. Calain, P., and L. Roux., "The rule of six, a basic feature for efficient replication of Sendai virus defective interfering RNA.", J. Virol., 67(8), 4822~4830 (1993). [PMID:8392616]
  3. Kolakofsky, D., et al., "Paramyxovirus RNA Synthesis and the Requirement for Hexamer Genome Length: the Rule of Six Revisited.", J. Virol., 72(2), 891~899 (1998). [PMID:9444980]
  4. Sharma, V., et al., "Analysis of tetra- and hepta-nucleotides motifs promoting-1 ribosomal frameshifting in Escherichia coli.", Nucleic Acids Res., 42(11), 7210~7225 (2014). [PMID:24875478]
  5. WHO/CDS/CSR/NCS/2002.5-WHO Manual on Animal Influenza Diagnosis and Surveillancepdf
  6. Morimoto, S., et al., "Intranasal Sendai virus-based SARS-CoV-2 vaccine using a mouse model.", Genes Cells, 28(1), 29~41 (2023). [PMID:36401755]

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