IR / MAR遺伝子増幅法DNA試薬

哺乳動物細胞を宿主としたタンパク質発現系は、適切な立体構造や翻訳後修飾を必要とするようなタンパク質生産の目的で利用されています。しかしながら、他の発現系と比べて、哺乳動物発現系の生産性は決して高いものではありません。そのため高いタンパク質の生産性が要求される場合では、遺伝子増幅法による発現細胞の構築が行われています。遺伝子増幅法で構築した発現細胞では、多コピーに増幅された目的遺伝子が染色体上に導入されます。
IR / MAR遺伝子増幅法は、癌細胞株で見られる遺伝子増幅メカニズムの研究過程において発見された新しい原理に基づく遺伝子増幅技術です。哺乳動物複製開始領域（IR）と核マトリックス結合領域（MAR）を持つプラスミドは、細胞内で効率よく遺伝子増幅を起こします。従って、本品（IR / MAR配列を持つDNA）と共に発現ベクターを適当な宿主細胞株にトランスフェクションすることにより、遺伝子増幅された発現株を作製することができます。トランスフェクション後は通常の薬剤選抜により、安定発現株を取得することができます。

※ 本製品は研究用です。研究用以外には使用できません。

1. 発現ベクターの準備
目的タンパク質の発現ベクターをご準備下さい。発現ベクターには任意の市販製品をお使いいただけます。発現ベクターは適当な制限酵素で直鎖化したのち精製して下さい。
2. トランスフェクション
トランスフェクション前日に、任意の宿主細胞を6ウェルプレートに播種して下さい。
市販のリポフェクション試薬のプロトコールに従い、直鎖化した発現ベクター1.0～2.0μgと本DNA試薬1.0～2.0μgを混和し、70～80％コンフルエントの宿主細胞に共導入して下さい。宿主細胞の播種密度、トランスフェクションの方法や効率などについては、別途ご検討の上、至適化を行って下さい。
対照として、本DNA試薬を含まないトランスフェクションを行うことにより、IR / MAR遺伝子増幅法の効果を判定することができます。
3. 薬剤選抜
トランスフェクションの翌日～翌々日に10 cmディッシュに継代し、発現ベクターの選択マーカーとBlasticidin Sによるダブルセレクションを開始して下さい。各薬剤の有効濃度は、あらかじめ宿主細胞ごとに決定しておいて下さい。
選抜開始の数日後から、ブラストサイジンS濃度を5～20倍程度高濃度にすることにより、より多コピーに遺伝子増幅したクローンを選抜することができます。通常、1ヵ月ほどの薬剤選抜により、安定発現株を取得することができます。
4. 高発現株の単離
得られた安定発現株は、限界希釈などの方法でクローニングすることにより、高発現株（モノクローン）を単離することができます。
高発現株のスクリーニングは、目的遺伝子のコピー数やmRNA発現量を定量PCRで測定するなどの方法で行うことができます。

6ウェルプレートに播種しサブコンフルエントに生育したHEK293細胞に、直鎖化した発現ベクター（Neomycin耐性）と本DNA試薬を2.0μgずつ混和したDNA液を調製しトランスフェクションを行った。
トランスフェクションには、市販のリポフェクション試薬を用いた。
トランスフェクションの翌日にウェルから細胞を回収し、10 cmディシュに播種した。培地はNeomycin（0.5 mg/ml）とBlasticidin S（10μg/ml）を含むDMEM＋10％FBSを用いた。
およそ4～7日ごとに継代を繰り返し、安定発現株を取得した。なお、2回目の継代からは、Blasticidin Sの添加濃度を100μg/mlとした。

2. RealTime-PCRによる高発現株のスクリーニング例

参考文献

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ライセンス条項

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価格

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